產(chǎn)品名稱：Recombinant Human ACTA1
貨號(hào)：A-01K99695
種屬：Human
宿主：E.Coli
表達(dá)區(qū)間：81-140
分子量：27.7 KDa
標(biāo)簽：N-terminal His-IF2DI Tag
純度：Greater than 95% as determined by SDS-PAGE
應(yīng)用：Western Blot, ELISA
性狀：Lyophilized from a 0.2 μm filtered solution in PBS with 5% trehalose, pH7.4
溶解方法：Centrifuge the vial at 10,000 rpm for 1 minute, reconstitute at 200 μg/ml in sterile distilled water by gentle pipetting 2-3 times, don’t vortex
存儲(chǔ)：-20°C for 12 months as lyophilized; 2-8°C for 1 month under sterile conditions after reconstitution
別名：ACTA, ACTA1, ACTA1 skeletal Muscle Actin, ACTA1 skeletal Muscle Actin Specific, Actin, alpha skeletal muscle, Alpha actin 1, ASMA, CFTD, CFTD1, CFTDM, MPFD, NEM1, NEM2, NEM3, sarcomeric actin

產(chǎn)品特點(diǎn)：

超過(guò)10,000種重組蛋白覆蓋大多數(shù)基因/靶點(diǎn)；
5種表達(dá)系統(tǒng)，包括大腸桿菌（E.coli）、酵母、桿狀病毒感染的昆蟲細(xì)胞、哺乳動(dòng)物細(xì)胞和體外大腸桿菌。而體外大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)是獨(dú)特表達(dá)系統(tǒng)。與傳統(tǒng)蛋白表達(dá)系統(tǒng)相比，體外大腸桿菌省略了許多過(guò)程，如質(zhì)粒轉(zhuǎn)化、細(xì)胞培養(yǎng)、收集、破碎和離心等，大大提高了工作效率。
多種標(biāo)簽，包括His、GST、Flag、MBP等。
廣泛應(yīng)用，包括抗原、細(xì)胞分析、結(jié)合分析/蛋白質(zhì)相互作用、細(xì)胞培養(yǎng)-無(wú)血清培養(yǎng)基、相關(guān)研究、體外酶活性、ELISA標(biāo)準(zhǔn)及其原料、體內(nèi)研究、質(zhì)譜標(biāo)準(zhǔn)、蛋白芯片、SDS-PAGE控制、蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)分析（晶體/電子顯微鏡）。
多種物種，包括人類、小鼠、大鼠、兔子、豚鼠、雞、猴子、豬等。
無(wú)動(dòng)物副產(chǎn)品的動(dòng)物源性重組蛋白質(zhì)。已開(kāi)發(fā)出無(wú)動(dòng)物副產(chǎn)品接觸的重組蛋白質(zhì)產(chǎn)品線。

重組蛋白注意事項(xiàng)：
表達(dá)系統(tǒng)選擇：選擇適合的表達(dá)系統(tǒng)，如大腸桿菌、酵母、哺乳動(dòng)物細(xì)胞等。不同的表達(dá)系統(tǒng)具有不同的特點(diǎn)和優(yōu)勢(shì)，需要根據(jù)目標(biāo)蛋白的性質(zhì)和需求來(lái)選擇合適的表達(dá)系統(tǒng)。
蛋白穩(wěn)定性：重組蛋白可能具有較低的穩(wěn)定性，容易失活或聚集。因此，在操作過(guò)程中需要注意溫度控制、使用保護(hù)劑、避免凍融循環(huán)等，以保持蛋白的穩(wěn)定性。
細(xì)胞破碎方法選擇：選擇合適的細(xì)胞破碎方法來(lái)釋放目標(biāo)蛋白。常用的方法包括超聲波破碎、高壓破碎、液氮冷凍破碎等。需要根據(jù)目標(biāo)蛋白的性質(zhì)和研究要求選擇合適的方法，并注意避免蛋白的降解和氧化。
親和層析柱選擇：根據(jù)目標(biāo)蛋白的性質(zhì)和特點(diǎn)選擇合適的親和層析柱。常見(jiàn)的親和層析柱包括鎳柱、葡萄糖柱、蛋白A/G柱等。注意根據(jù)蛋白的親和配體選擇合適的緩沖液和洗脫條件。
溫度和pH控制：在純化過(guò)程中，需要注意維持適當(dāng)?shù)臏囟群蚿H條件。這有助于保持蛋白的穩(wěn)定性和活性。使用合適的緩沖液和調(diào)節(jié)劑來(lái)維持適當(dāng)?shù)臈l件。
洗脫和濃縮：在洗脫步驟中，選擇適當(dāng)?shù)南疵摼彌_液和濃縮方法來(lái)獲得高純度的目標(biāo)蛋白。常用的洗脫方法包括梯度洗脫、酸洗脫、融合蛋白切割等。
純化評(píng)估：使用合適的方法評(píng)估純化后的蛋白質(zhì)樣品的純度和活性。

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