實驗外包-**組化(IHC)實驗注意事項
**組織化學技術(shù)按照標記物的種類可分為**熒光法、**酶法、**鐵蛋白法、**金法及放射**自顯影法等。
1、 標本的固定
組織標本及時的取材和固定是做好**組化染色的關(guān)鍵**步,是有效防止組織自溶壞死,抗原丟失的開始。離體組織應(yīng)盡快的進行取材固定,*好20分鐘內(nèi),因為有些抗原若固定不及時可能就檢測不到了。而對于固定液的選擇,原則上講,應(yīng)根據(jù)抗原的耐受性來選擇相應(yīng)的固定液,但在病理常規(guī)工作中很難做到這一點,因為病理的診斷和鑒別診斷都是在常規(guī)HE病理診斷的基礎(chǔ)上決定是否進行**組化的染色,而HE染色的常規(guī)組織處理是采用10%的中性緩沖福爾馬林或4%緩沖多聚甲醛進行組織固定,利用其滲透性強,對組織的作用均勻進行固定。組織固定時間*好在6-24小時內(nèi),一般組織固定時間不應(yīng)超過24小時,隨著固定時間的延長對組織抗原的檢出強度將逐漸降低。另外,非中性福爾馬林緩沖液、含酸和含汞固定液亦可導致標記失敗或減弱。
2、 蠟塊的選擇
正確選擇用于**組化的蠟塊也是確保染色質(zhì)量的關(guān)鍵因素之一。很多病例的組織蠟塊不止一個,不同的蠟塊中,組織成分常常并不完全一樣,一般選擇*具代表腫瘤特異性的蠟塊,*好含有內(nèi)對照。更值得注意的是,所選取的蠟塊除了要包含代表腫瘤特異性的組織外,應(yīng)盡量避免含有出血、壞死和脂肪組織。這些組織內(nèi)的抗原大多已被破壞或丟失,*終通常呈片狀彌漫染色,除影響制片的美觀外,容易導致誤判或誤診。而且這些組織通常影響切片的質(zhì)量。另外,*好不要選擇冰凍剩余組織或脫鈣組織,冰凍或脫鈣一般也會影響組織內(nèi)的抗原。
3、 修復(fù)方法的選擇和對比
抗原修復(fù)是指石蠟切片**組化染色前用酶、表面活性劑或微波、金屬鹽等對被掩蓋的抗原決定簇或變性的抗原進行暴露和修復(fù),使抗原性得到一定程度的恢復(fù)過程。修復(fù)的方法有酶(胰酶、蛋白酶等)消化、加熱法(水浴、微波和高壓煮沸等)和超聲處理等,或者綜合利用以上方法。目前*常用的是加熱煮沸法,少數(shù)用酶消化法。大量實驗表明,固定時間越長的標本,所形成的交聯(lián)就越緊密,抗原就越難以被激活,所需的修復(fù)強度也就越強。各種修復(fù)方法染色強度的比較為:高壓法>水浴法>微波法。在日常工作中,要根據(jù)不同抗原的特性選擇合適的修復(fù)方法。抗原修復(fù)液常用的有枸櫞酸緩沖液(pH 6.0)、EDTA緩沖液(pH 8.0~9.0)等。修復(fù)液的PH值對染色結(jié)果也會產(chǎn)生相當大的影響。研究發(fā)現(xiàn)在高PH值約pH8.0~9.0時,都有較好的染色結(jié)果,所以目前比較推崇的抗原修復(fù)液為高PH值的修復(fù)液,尤其是對核陽性的抗體。
4、 確定陽性對照
**組化染色過程比較復(fù)雜、影響因素也很多,故應(yīng)設(shè)置陽性對照和陰性對照。尤其是陽性對照尤為重要。陽性對照包括兩種,一種為內(nèi)對照,這是一種比較理想的對照,對照和測試組織都在同一張切片中,都處于相同的實驗條件下,結(jié)果更可靠也更具有可比性。另一種稱為外對照,有時在測試的切片中不存在已知的抗原,如在胃的標本中懷疑是惡性黑色素瘤,在正常的胃組織中本身不存在相關(guān)的抗原,如果病變出現(xiàn)陽性反應(yīng)結(jié)果,尚能提示是惡黑,但是如果出現(xiàn)陰性結(jié)果,就無法確定是本身組織中不含黑色素瘤抗原,還是技術(shù)問題。因此,應(yīng)另外設(shè)立一個已知的陽性對照。另外,比較簡單的方法,是采用闌尾作為陽性對照。闌尾包含的組織種類較多,如有上皮、**組織、平滑肌、間質(zhì)、神經(jīng)、血管、間皮等。因此,一張闌尾切片可以檢測大多數(shù)常用的抗體。
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